Preparación del reactivo de Schiff. Detección histoquímica de polisacáridos.

SCHIFF REACTIVO

Solución acuosa de fucsinsulfuro (formas I o II). Sirve para la detección cualitativa de aldehídos. Al interactuar sr. con el aldehído RCHO se forma un tinte violeta violeta (forma III).

La reacción es muy sensible (por ejemplo, se puede detectar 1 mcg de formaldehído). Al mismo tiempo aromático. Los hidroxialdehídos, muchos de ellos insaturados, no dan coloración. Algunos (p. ej.), compuestos insaturados, inorg. y org. las bases, una serie de sales capaces de hidrólisis y todos los compuestos que oxidan el dióxido de azufre conducen a la formación de un color rosa. Por tanto, la aparición de un color rosa claro no puede considerarse positiva. Prueba de aldehído.
sr. Se obtiene pasando SO 2 por una solución acuosa de fucsina al 0,025 % hasta que decolora. Al determinar los grupos aldehídos, es necesario hacerlo de forma preliminar. lleve la acidez a pH 3 agregando al Sh. para usted o una mezcla tampón. Generalmente se lleva a cabo un experimento de control. cuando se calienta La solución de fucsina-azufre puede hacer que te sonrojes.
El método subyacente al uso de Sh. R. fue descubierto por G. Schiff en 1864.

Iluminado.: Guben-Weil, Métodos de química orgánica, trad. Del alemán, 4ª ed., volumen 2. Métodos de análisis, M., 1963, p. 431-32; Identificación de compuestos orgánicos, trans. Del inglés, M., 1983, p. 195-96; Mazor L., Métodos de análisis orgánico, trad. Del inglés, M., 1986, pág. 122-24.

I A. Kutseva.

Enciclopedia química. - M.: Enciclopedia soviética. Ed. I. L. Knunyants. 1988 .

Vea qué es "SCHIFFA REACTIVE" en otros diccionarios:

- (H. Schiff; sinónimo de ácido fucsinoso) reactivo para la determinación cualitativa del grupo aldehído de compuestos orgánicos, descubierto por Hugo Schiff. Contenido 1 Recibo 2 Almacenamiento ... Wikipedia

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reactivo de schiff- ácido fucsinoso Reactivo destinado a la determinación cualitativa de grupos aldehído; se utiliza en la reacción de Feulgen para la detección de ADN, así como en varias otras pruebas (para glucógeno, etc.). [Arefyev V.A., Lisovenko L.A. Inglés ruso... ... Guía del traductor técnico

Reactivo de Schiff Reactivo de Schiff, ácido fucsulfúrico. Reactivo destinado a la determinación cualitativa de grupos aldehídos; utilizado en la reacción de Feulgen al identificar ADN, así como en una serie de otras pruebas (para... ... Biología molecular y genética. Diccionario.

Una solución acuosa de fucsina, decolorada con dióxido de azufre. En presencia de aldehídos, esta solución se vuelve azul.

reactivo de Schiff.

¿Lo que es?

El reactivo de Schiff es una solución que se combina químicamente con aldehídos para formar un producto de color rojo brillante. Estrictamente hablando, las cetonas también reaccionan, pero a todos los efectos prácticos pueden ignorarse. Muchos componentes de la tela se pueden teñir de esta manera. El reactivo de Schiff se elabora a partir de pararosanilina tratada con ácido sulfuroso (H2SO3). Ésta es la razón de la destrucción del cromóforo mediante la adición de un grupo de ácido sulfónico al carbono central. El ácido sulfuroso se forma disolviendo dióxido de azufre (SO2) en agua.

En algunos textos, normalmente antiguos, encontrará el reactivo de Schiff denominado leucofucsina . Consola leuco medio blanco y se refiere a la pérdida de color en una solución. Sin embargo, leucobase Se refiere a compuestos reducidos y su color se recupera mediante oxidación. El reactivo de Schiff no tiene el color original de la pararosanilina. Más bien, el nuevo compuesto colorante se produce mediante una combinación química con un aldehído. Por esta razón ahora se le suele denominar reactivo de schiff o ácido fucsulfúrico.

No parece haber mucha diferencia con respecto a la fuente del ácido sulfuroso. Porque es simplemente dióxido de azufre disuelto en agua. Hay varias formas de conseguirlo. Cuatro procedimientos que se recomendaron:

· El gas dióxido de azufre del cilindro se burbujea lentamente a través de la solución de pararosanilina hasta que la solución comienza a cambiar de color. Luego se cierra con cuidado el recipiente y se guarda en un lugar oscuro, normalmente hasta la mañana o más.

· Compre una solución preparada de ácido sulfuroso. La pararosanilina se disuelve en él sin alta temperatura. Luego se cierra con cuidado el recipiente y se guarda en un lugar oscuro, normalmente hasta la mañana o más.

· Se añade metabisulfito o sulfito de sodio o potasio (cuyos ejemplos comerciales aparentemente están compuestos principalmente de metabisulfito) a la solución de pararosanilina. Se agrega ácido clorhídrico, produciendo dióxido de azufre en solución. Luego se cierra con cuidado el recipiente y se guarda en un lugar oscuro, normalmente hasta la mañana o más.

A la solución de pararosanilina se añaden reactivos que se descomponen en solución para producir dióxido de azufre, como hidrosulfito de sodio (ditionito) o cloruro de tionilo. Luego se cierra con cuidado el recipiente y se guarda en un lugar oscuro, normalmente hasta la mañana o más.

El reactivo de Schiff debe ser incoloro o de color amarillo muy pálido. Sin embargo, la pararosanilina puede contener otros colorantes, especialmente si provienen de una muestra de fucsina básica que es una mezcla. Otros tintes suelen ser homólogos de la pararosanilina, como la rosanilina y el magenta II, pero producen soluciones de color ámbar intenso y pueden teñir los aldehídos de color rojo pardusco. Estos productos más oscuros se pueden eliminar añadiendo una pequeña cantidad de carbón activado en polvo, agitando la solución durante un minuto y filtrando. En ocasiones este tratamiento no funciona y la solución queda de color marrón. Desafortunadamente, si se agrega suficiente carbón para eliminar completamente todo el color marrón mediante decoloración, es posible que la solución transparente final solo produzca un color muy pálido. Esto normalmente significa que se utilizó una muestra de fucsina básica que contiene grandes cantidades de uno de los otros colorantes. Si es posible, compre muestras de fucsina básica que figuren como adecuadas para el reactivo de Schiff o compre pararosanilina. Como se indicó anteriormente, el reactivo de Schiff se combina con aldehídos para producir un producto de color rojo brillante. En histología, estos aldehídos se adhieren a estructuras tisulares o se forman a partir de ellas, adquiriendo un color rojo muy brillante. Para todos los aldehídos de los tejidos, el mecanismo es el mismo. El aldehído se condensa con el reactivo de Schiff para formar un nuevo compuesto que se adhiere al tejido. El proceso convierte el cromóforo y produce color. Ácido fucsinoso. reactivo de schiff Aldehído Fórmula de producto regular. Fórmula de producto alternativa. Observe los dobles enlaces convertidos en el producto (resaltados en rojo) debido a la adición de aldehído. El nuevo producto rojo se presenta en dos fórmulas. La mayoría de las explicaciones las da el primero: este es el producto final. Sin embargo, algunos textos dan una representación alternativa que involucra un aldehído. En cualquier caso, el producto coloreado consta de un reactivo de Schiff, un aldehído y el reactivo al que está unido el aldehído. Kiernan informó que investigaciones recientes indican que el producto es distinto del anterior y existe como un tautómero de los dos productos que se presentan a continuación. Para elaborar reactivos tipo Schiff se pueden utilizar otros colorantes. A menudo se les conoce como pseudo-Schiff reactivos. Por lo general, están coloreados, no completamente blanqueados, aunque el color y la claridad de la solución suelen variar. Es posible que los compuestos de color residuales en estas soluciones puedan teñir los tejidos a través de un mecanismo iónico. Para eliminar esta mancha, es una práctica común tratar las secciones con alcohol ácido después de teñirlas. Cualquier color que quede después del tratamiento con alcohol ácido es una reacción positiva del reactivo pseudo-Schiff. Ninguno de estos reactivos pseudo-Schiff ha alcanzado la popularidad del reactivo de pararosanilina de Schiff, y esta solución sigue siendo el estándar. La razón es el color rojo claro y brillante del reactivo de pararosanilina de Schiff. Otros tintes producen un color débil, aunque pocos son realmente eficaces. Las soluciones que se han vuelto más comunes se elaboran con un tinte fluorescente, la acriflavina (ver más abajo), por ejemplo. Proporcionan un resultado positivo fluorescente que puede resultar muy útil para demostrar materiales como, por ejemplo, hongos, que pueden estar presentes en pequeñas cantidades. Culing proporciona una lista de muchos de estos tintes, varios de los cuales se enumeran aquí. Para obtener más información, consulte los escritos de Kasten que se enumeran a continuación Culing. Nombre CI No. Color Nombre CI No. Color fucsina agria Violeta acriflavina Cristal violeta Violeta Azul. violeta de metilo púrpura. Azul de metileno Safranina O azul de toluidina Cuando los tejidos se retiran del reactivo de Schiff y se lavan, inevitablemente se transfieren al líquido de lavado. Si se utiliza agua del grifo, el reactivo cambia rápidamente de color y el agua se vuelve muy roja. Inicialmente, existía cierta preocupación de que este reactivo de Schiff para volver a teñir se comportaría como un tinte base y teñiría el tejido, dando resultados falsos positivos. Por este motivo se recomendaron enjuagues con sulfito. Disuelven el ácido sulfuroso y se utilizan para eliminar el reactivo de Schiff durante unos minutos, disolviéndolo lo suficientemente bien antes de lavar las telas en agua, asegurando que no haya posibilidad de manchas sin aldehído. La experiencia a lo largo de los años ha demostrado que estos enjuagues no son necesarios y un buen lavado con agua del grifo es satisfactorio siempre que las secciones no queden en el reactivo de Schiff, que devuelve el color. Si se utiliza reactivo pseudo-Schiff, las secciones deben tratarse con ácido clorhídrico al 1% en etanol al 70% durante 5 a 10 minutos después de este lavado. Algunos de ellos están coloreados, no pueden blanquearse completamente y pueden teñirse mediante un mecanismo iónico. El alcohol ácido eliminará dichas manchas. Después del tratamiento con alcohol ácido, las secciones se deben lavar con agua del grifo como de costumbre. Aunque el reactivo de Schiff se utiliza para detectar aldehídos, normalmente no se encuentran libres en los tejidos y deben producirse de alguna manera. Hay tres maneras de hacer esto. El primero, y con diferencia el más común, es la oxidación de algunos componentes del tejido. Esto produce grupos aldehído, lo que permite que el material al que está unido el componente quede expuesto. La segunda forma es tratar las secciones con ácidos para convertir parte de la desoxirribosa en ADN y aldehídos y luego teñirlas con el reactivo de Schiff. La tercera consiste en aplicar el aldehído directamente al tejido, generalmente una proteína, y luego demostrar el aldehído con el reactivo de Schiff. Esto último se puede observar fácilmente con fijación con glutaraldehído para microscopía óptica. El glutaraldehído tiene dos grupos aldehído y, si las moléculas son atraídas por el tejido de uno de ellos, el otro permanece libre cuando se completa la fijación. Debido a esto, en cualquier procedimiento que utilice el reactivo de Schiff, los aldehídos individuales reaccionarán con él, produciendo un fondo de color rosa intenso. Entonces, antes de que se pueda aplicar el reactivo de Schiff a estas secciones, se deben bloquear los aldehídos para que no puedan reaccionar. Para cualquier aplicación de precisión que utilice este reactivo, se deben utilizar dos controles. La primera es una rebanada a la que se le ha aplicado bloqueo con aldehído. La segunda es una sección en la que se aplicó el reactivo de Schiff al tejido sin ningún tratamiento previo. De este modo, el primer corte bloquea los aldehídos preexistentes, mientras que el segundo resalta su ubicación. Además, por supuesto, se deben utilizar secciones con controles negativos y positivos establecidos para el elemento del tejido diana. Si estos dos últimos controles no se tiñen como se esperaba, entonces se debe examinar el reactivo de Schiff, y ningún otro, para garantizar que no se haya deteriorado y que sea adecuado para su uso. Histoquímica: teórica y aplicada. Ed. 3 Pearse, A. G. E., 1968, 1972, v.1, pp.448 Churchill Livingstone, Edingburgh, Londres, Reino Unido Métodos histológicos e histoquímicos: teoría y práctica. Ed. 3 Kiernan. J. A., 1999, págs. 203 Butterworth Heinemann Oxford, Reino Unido. manual de técnicas histopatológicas e histoquímicas. Ed. 3 Culling C. F. A., 1974, págs. 249, 250 Butterworth Londres, Reino Unido. citando: Kasten, F.H., 1958 Stain Technology, vol.33, pp.39 y Kasten, F.H., 1959 Histoquímica, vol.1, págs.466 Técnica histopatológica e histoquímica práctica. Ed.2 Lillie, R. D., 1954 Blakiston Nueva York, Estados Unidos. http://stainsfile. info/StainsFile/stain/schiff/schiffwhatis. htm Reacción del ácido periódico-Schiff Ácido periódico – Schiff La reacción PAS se utiliza para demostrar la presencia de 1,2 glicoles y, por lo tanto, es una técnica importante en la histoquímica de carbohidratos y la demostración histológica de muchas estructuras. Soluciones 1% de ácido peryódico acuoso Reactivo Schiffa Gemalaun mayer Fijación y cableado La mayoría de los sujetadores y métodos de cableado son satisfactorios. La fijación con glutaraldehído requiere bloqueando los aldehídos antes de pintar. Método 1. Llevar las secciones a agua a través de xileno y etanol. 2. Colóquelo en ácido peryódico durante 10 a 30 minutos. 3. Enjuague bien con agua del grifo. 4. Enjuague con agua destilada. 5. Colocar en reactivo de Schiff durante 10 a 30 minutos. 6. Lavar con agua destilada. 7. Lave bien con agua del grifo durante aproximadamente 10 minutos. 8. Finalizar con hemalaun de Mayer durante 2 minutos. 9. Lavar bien con agua del grifo hasta que el hemalaun de Mayer se vuelva azul. 10. Deshidratar con etanol, aclarar con xileno e incluir en un medio resinoso. Resultados previstos Notas · Los fijadores de glutaraldehído liberan grupos aldehído libres atrayéndolos a los tejidos. Provocan una reacción completamente falsa positiva. Se debe impedir que reaccione mediante un procedimiento adecuado, como el bloqueo anilina-acético. · Se necesita agua del grifo en el paso 7 para que se desarrolle el color rojo. Dentro de ciertos límites, los tiempos de lavado más prolongados producen un color más oscuro. · Inicialmente, se recomendó lavar el reactivo de Schiff disolviendo ácido sulfuroso (enjuague con sulfito). Si bien el agua devolvió el color al reactivo de Schiff, se supuso que el agua lavada podría dar lugar a resultados falsos positivos. Ahora se sabe que este no es el caso si el reactivo de Schiff se elimina rápidamente y las secciones no permanecen mucho tiempo en el agua contaminada con él. La siguiente lista, también compilada por Culling, brinda los materiales positivos para CHIC que se encuentran comúnmente, aunque no es exhaustiva: · Acumulaciones de actinomicetos. · Membranas basales. · Cerebrilos. Colágeno del tejido conectivo areolar. · Lípidos compuestos. · Glucógeno. · Querazina (enfermedad de Gaucher). · Túbulos renales. · Gránulos de megacariocitos. Mucinas: § tracto intestinal, § glándulas de pepsina, § glándulas del cuello uterino, § glándulas salivales, § conjuntiva, § glándulas bronquiales, § folículos y quistes ováricos, § secreción de las glándulas prostáticas, § cuerpos amiloides, · Cápsula del cristalino del ojo. · Gránulos zimogénicos pancreáticos. · Gránulos de células de Paneth (ratas, cobayas, conejos). · Fosfolípidos. · Células B de la hipófisis. · Cilindros hialinos renales. · Bastones de la retina. · Corpúsculos de Roussel. · Almidón. · Coloide tiroideo. citando: Hotchkiss, R.D., 1948 Arq. Bioquímica, vol 16, págs. 131 http://stainsfile. info/StainsFile/stain/schiff/pas-standard. htm Última actualización en agosto de 2003.

La reacción de Feulgen indica la presencia de ADN, por lo que se puede utilizar principalmente para indicar la presencia o ausencia de núcleos en las células, su tamaño, forma, ubicación, etc. Además, la intensidad de la tinción puede dar indicaciones indirectas de cambios cuantitativos en ADN.

El reactivo de Schiff, el ácido fucsinoso, es un reactivo característico de los aldehídos. La reacción de Feulgen con este reactivo en el ADN también se basa en la capacidad del reactivo de Schiff para interactuar con grupos aldehído. Sin embargo, debido a que los grupos aldehídos de la molécula de ADN están unidos, primero es necesario liberarlos. Esto se logra mediante la hidrólisis del ADN con un ácido débil, como resultado de lo cual las bases purínicas (adenina, guanina) se separan de la molécula de ADN y se forma el resto de la molécula de ADN con grupos aldehído libres:

El cambio se produce en el primer átomo de carbono de la desoxirribosa; Se revela un grupo aldehído potencial en el sitio de abstracción de la base purina. En. Esto convierte la forma furanosa de la desoxirribosa en la forma de azúcar no cíclica. Durante la reacción, se añade una molécula de ácido fucsinoso a los dos grupos aldehído de la desoxirribosa.

El ácido fucsinoso (leucofucsina) se obtiene a partir de una solución ácida de fucsina básica (parafucsina) en 1 N. ácido clorhídrico cuando se satura con dióxido de azufre. El dióxido de azufre se forma por la interacción del ácido clorhídrico con bisulfito de sodio, que se agregan a una solución ácida de fucsina básica:

HCl+NaHSO 3 =NaCl+SO 2 +H 2 O

Cuando se pasa dióxido de azufre a una solución de fucsina, se rompen dos dobles enlaces, el grupo quinoide desaparece en uno de los tres anillos aromáticos de la fucsina y con él el color rojo lila característico de la fucsina. El ácido fucsinoso es un compuesto frágil e incoloro.

La producción de ácido fucsinoso a partir de fucsina básica se produce de la siguiente manera: la fucsina, al interactuar con el ácido clorhídrico, forma un compuesto complejo, que luego reacciona con el ácido sulfuroso de acuerdo con el siguiente esquema:

Así, durante la formación del ácido fucsinoso, se añaden dos grupos (-SO 2 H) a la fucsina.

Al reaccionar con aldehídos, se restaura el grupo quinoide, ya que el ácido fucsinoso es un compuesto inestable y se descompone para formar ácido sulfuroso.

Cuando una molécula de ácido fucsinoso reacciona con dos moléculas de residuos de ADN que tienen grupos aldehídos expuestos, se obtiene una molécula de un compuesto coloreado.

Al preparar material para la reacción de Feulgen, generalmente se recomienda la fijación en alcohol y fijadores ácidos. El más utilizado es el fijador de Carnoy (p. 45). Este fijador precipita las nucleoproteínas, lo que conduce a cuadros morfológicos exitosos. Sin embargo, la permanencia prolongada del material en el fijador provoca la destrucción del enlace entre los ácidos nucleicos y las proteínas, conduce a una extracción gradual de los ácidos nucleicos y da una imagen distorsionada. Por tanto, la estancia en el fijador debe limitarse al máximo.

reactivos

1) Reactivo de Schiff (ácido fucsinoso).

Preparación del reactivo de Schiff. Moler 1 g de fucsina básica en un mortero y disolver en 200 ml de agua destilada hirviendo; enfriar a 50°C. Añadir 20 ml de 1 N a la solución enfriada. ácido clorhídrico * y enfriar a 25°C. Añadir 1 g de bisulfito o metabisulfito de sodio. Agitar la mezcla resultante con carbón activado (de 1 a 3 minutos) y filtrar. Vierta en un recipiente oscuro o envuélvalo en papel oscuro, ciérrelo con un tapón esmerilado y colóquelo en la oscuridad durante 12 horas o más hasta que la fucsina principal se decolore y se forme ácido fucsulfuroso.

* (1 n. El ácido clorhídrico corresponde a una solución al 10% preparada a partir de ácido clorhídrico concentrado (sp. 1.19).)

2) Agua sulfurosa.

Preparación de agua sulfurosa. A 200 ml de agua destilada agregar 20 ml de 1 N. Ácido clorhídrico y 1 g de bisulfito de sodio.

3) 1 n. ácido clorhídrico.

4) Medios para deshidratar objetos y recubrirlos con bálsamo de Canadá (págs. 66-70).

5) Bálsamo de Canadá.

Llevando a cabo la reacción.

* (Véase la nota a pie de página en la página 118.)

1. Sumergir las preparaciones en 1 N. ácido clorhídrico durante unos segundos.

2. Transfiérelos a 1 n.precalentado a 60° C. HCl y colocar en un termostato a una temperatura de 60° C (o al baño maría a la misma temperatura) durante 5-10 minutos *.

* (La duración de la hidrólisis depende del fijador utilizado. Cuando se utiliza fijador de Carnoy y formalina, el tiempo óptimo es de 8 minutos.)

3. Enjuagar las preparaciones con agua fría 1 N. HCl.

4. Colóquelos en reactivo de Schiff durante 1 hora.

5. Lavar el exceso de reactivo de Schiff con agua sulfurosa (3 turnos de 3 a 5 minutos cada uno).

6. Enjuague las preparaciones en agua del grifo durante 5-10 minutos, reemplazando el agua que comienza a ponerse rosada.

7. Llevar las preparaciones al bálsamo mediante alcohol 96%, 100%, una mezcla de alcohol con xileno y xileno.

8. Observe la aparición de un color carmesí.

Resultados de la reacción (Tabla 20)

En la punta de la raíz de la cebolla, los granos adquieren un color violeta carmesí. Los núcleos de la zona de extensión y especialmente de la zona de succión parecen algo menos brillantes que los núcleos de la zona de fisión. Los nucléolos, el citoplasma y las membranas celulares permanecen sin teñir.

En el grano de maíz, los granos de la raíz, la yema y todos los demás tejidos del embrión, así como las células de la capa de aleurona, adquieren el color característico de la reacción de Feulgen. Los núcleos aplanados y estirados de las células del endospermo se tiñen más pálidos.

(N. Schiff, 1834-1915, bioquímico alemán)
un reactivo para la determinación cualitativa del grupo aldehído de sustancias orgánicas, que es una solución de ácido fucsinoso; Se utiliza para la detección histoquímica de carbohidratos y ácido desoxirribonucleico.

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Reactivo- -A; m.[de lat. re - contra y activus - eficaz] Chem. Sustancia de composición y pureza definidas con precisión que se utiliza para llevar a cabo una reacción química. Químico........
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Reactivo de Gunzburg— (A. O. Gunzburg, nacido en 1861, médico alemán) reactivo que contiene floroglucinol, vainillina y alcohol, utilizado en la determinación cualitativa del ácido clorhídrico en el jugo gástrico.
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Reactivo- (reactivo), una sustancia que participa en una reacción química. El término se utiliza a menudo para referirse a un reactivo estándar de laboratorio, es decir, una sustancia utilizada........
Diccionario enciclopédico científico y técnico.

Reactivo de Strzyzowski- (S. Strzyzowski, nacido en 1868, bioquímico suizo) una mezcla de alcohol etílico, ácido acético glacial y yodhídrico, utilizada en medicina forense para detectar sangre en......
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Reactivo de tala— (I. A. Folling; sinónimo líquido de Folling) reactivo para la determinación cualitativa y cuantitativa de aldehídos, los azúcares reductores más simples y algunas otras sustancias.....
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Reactiva Folina-Ciocalteu- (O.K.O. Folin, 1867-1934, fisiólogo y químico sueco; V. Ciocalteu, 1890-1947, médico y bioquímico rumano) una mezcla de soluciones de tungstico sódico y molibdato sódico, a la que se añade...
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Reactivo de Schiff- (N. Schiff, 1834-1915, bioquímico alemán) un reactivo para la determinación cualitativa del grupo aldehído de sustancias orgánicas, que es una solución de ácido fucsulfuroso;......
Gran diccionario médico

reactivo de schiff— (reactivo de Schiff): una solución acuosa de fucsina decolorada con dióxido de azufre. En presencia de aldehídos, esta solución se vuelve azul.
Enciclopedia psicológica

Reactivo de Schiff- una solución acuosa de fucsina, decolorada con dióxido de azufre. En presencia de aldehídos, esta solución se vuelve azul.
Diccionario medico

(N. Schiff, 1834-1915, bioquímico alemán)

un reactivo para la determinación cualitativa del grupo aldehído de sustancias orgánicas, que es una solución de ácido fucsinoso; Se utiliza para la detección histoquímica de carbohidratos y ácido desoxirribonucleico.

• - un reactivo para detectar glucosa en la orina, que es una solución acuosa de sulfato de cobre, citrato de sodio y carbonato de sodio...

  Enciclopedia médica

• - un reactivo que contiene floroglucinol, vainillina y alcohol, utilizado en la determinación cualitativa del ácido clorhídrico en el estómago...

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• - una mezcla de alcohol etílico, ácido acético glacial y yodhídrico, utilizada en medicina forense para detectar sangre en manchas...

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• - un reactivo que contiene 2,5 g de ácido oxálico, oxalato de amonio y ácido acético glacial por 150 ml de su solución acuosa...

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• - un reactivo para la determinación cualitativa y cuantitativa de aldehídos, los azúcares reductores más simples y algunas otras sustancias en fluidos biológicos...

  Enciclopedia médica

• - una mezcla de soluciones de tungstico sódico y de molibdato sódico, a las que se añaden sucesivamente ácido fosfórico, clorhídrico y, después de hervir, sulfato de litio, así como unas gotas de agua con bromo...

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• - a, m.quim. Sustancia que provoca una determinada reacción característica cuando se combina con otra sustancia y, por lo tanto, permite detectar la presencia de esta última en una composición determinada...

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Prueba número 2.